Angew. Chem. Int. Ed.|半胱氨酸突变结合点击化学驱动组蛋白邻近位点特异性乙酰化修饰

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今天分享一篇发表在Angew. Chem. Int. Ed.上题为Cysteine-Assisted Click-Chemistry for Proximity-Driven, Site-Specific Acetylation of Histones的文章。文章的通讯作者是剑桥大学的Gonçalo J. L. Bernardes教授。

组蛋白的翻译后修饰对染色质结构和功能的调控至关重要。乙酰化是一种常见的翻译后修饰,发生在组蛋白赖氨酸(赖氨酸或K)残基的ɛ-胺侧链上。乙酰基的转移中和了赖氨酸残基的正电荷,从而减少了组蛋白与DNA的相互作用,浓缩的染色质转化为一种更宽松的结构,这有利于转录因子接近DNA,进而促进下游基因的转录。尽管组蛋白中有许多乙酰化标记,但是很难获得含有单个乙酰基的组蛋白样本,因此对单个位点的功能研究非常有限。作者提出了一种新的策略,将半胱氨酸偶联与点击化学结合,使组蛋白上单个近端赖氨酸残基特异性位点发生乙酰化(图1)。

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图1.半胱氨酸辅助点击化学驱动位点特异性乙酰化策略
考虑到组蛋白H3中赖氨酸9乙酰化的生物学意义,作者决定以其为靶点来测邻近驱动乙酰化方法。首先合成了组蛋白H315个氨基酸的初始序列,其中单个半胱氨酸残基取代了K9周围的赖氨酸,生成了两个不同的肽段K4CK14C。加入马来酰亚胺-DBCO与半胱氨酸反应,随后加入含有叠氮基团的的乙酰化试剂gem-dithioacetate(偕二硫代乙酸酯),通过邻近驱动实现相邻赖氨酸位点上的乙酰化。作者首先在H3尾肽中测试,多肽K4CK14C在轻微过量马来酰亚胺-DBCO的条件下反应,利用这些修饰的多肽,尝试对K9进行定向乙酰化,对反应条件进行了优化,得到了完全转化的乙酰化产物,乙酰化肽在1个月后未见明显降解。使用高分辨率FT-ICR质谱和MS/MS实验来绘制得到的肽段,确认乙酰化发生在最近的亲核残基K9中。对于这两种多肽,乙酰化总是发生在最靠近修饰半胱氨酸的赖氨酸上(2a)。作为对照,单乙酰化多肽与碘乙酰胺反应,以证实与马来酰亚胺的反应只发生在半胱氨酸。为了确定SPAAC反应对于将乙酰化反应导向附近的K9残基至关重要,作者在上述相同的反应条件下将这两个多肽与不含炔基马来酰亚胺结合,在K4CK14C肽中均未检测到乙酰化(2b)
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2.组蛋白H3肽段的乙酰化策略。a)MS/MS分析证实,组蛋白H3K4CK14C肽与马来酰亚胺- DBCO和含有叠氮基团的的乙酰化试剂gem-dithioacetate的顺序反应导致最近的赖氨酸残基发生位点特异性乙酰化。b)组蛋白H3K4CK14C肽与不含炔的马来酰亚胺试剂的顺序反应以及马来酰亚胺- dbco4之间的click产物不促进乙酰化。

鉴于两步结合反应在多肽中起到各自的作用,作者进行了两个额外的试验。首先通过反式迈克尔加成的硫醇交换去除仍附着在半胱氨酸残基上的SPAAC反应副产物。β-巯基乙醇作为硫醇化合物,在这个过程中发生了不可逆的马来酰亚胺水解,这导致大量(20-30%)的副产物未改变。此外,还观察到在反式迈克尔加成后乙酰化的K9水解(20%),产生未修饰的K4CK14C肽。这些实验证明了半胱氨酸辅助点击化学在驱动近端特定位点赖氨酸乙酰化的可行性,并证明了其在多肽上近端驱动乙酰化方面的潜力。

接下来,作者用一种依赖NAD+的组蛋白去乙酰化酶识别乙酰化肽,在适合发生去乙酰化的条件下,将修饰过的K4CK14C肽与Sirt6孵育,可以去除组蛋白H3特异性赖氨酸残基K9K56。虽然去乙酰化是不完全的,但观察到两个多肽的结果之间的显著差异。对于修饰的K4C肽,脱乙酰产物的转化率为40%,而修饰的K14C肽的转化率为< 20%。这些结果作为初步的数据来证明修饰的多肽能够被组蛋白去乙酰化酶识别。对单一半胱氨酸突变体H3K4C的全长蛋白进行了与K4CK14C肽相同的反应,得到相应的单乙酰化产物H3K4C**K9Ac,分析三个蛋白(H3K4C, H3K4C**H3K4C**K9Ac)的圆二色(CD)图谱表明H3K4C的整体二级结构在半胱氨酸结合和SPAAC反应后均没有改变。高分辨率FT-ICR质谱和MS/MS实验结果显示仅在残留K9处发生乙酰化,证实了这种方法的位点特异性。

为了验证这一方法是否可以应用其他赖氨酸残基中乙酰化,作者选择了组蛋白H3内部残留较多的K56作为定向乙酰化策略的第二个靶点。得到单半胱氨酸突变体H3R52C (C110A),并进行重组表达和纯化,使用与H3K4C蛋白相同的条件处理,得到相应的单乙酰化产物H3R52C**K56Ac,修饰后的蛋白与Ellman试剂没有反应,证实马来酰亚胺- DBCO结合H3R52C游离的半胱氨酸。因此,该方法不仅可以修饰容易修饰的残基,而且可以修饰蛋白质序列中受阻碍和约束的残基。此外,为了证实SPAAC反应修饰最近的赖氨酸,从而使蛋白质发生乙酰化。作者将H3K4CH3R52C与马来酰亚胺- DBCO和含有叠氮基团的的乙酰化试剂gem-dithioacetate的顺序反应(图3),与之前的K4CK14C类似,在这两个蛋白中也均未检测到乙酰化。
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3.组蛋白H3的乙酰化策略。组蛋白H3K4CH3R52C与马来酰亚胺- DBCO和含有叠氮基团的的乙酰化试剂gem-dithioacetate的顺序反应导致这些蛋白的单乙酰化

最后,作者测试了这种策略是否会干扰修饰原本的性质。作者验证化学乙酰化的H3K4C**K9AcH3R52C**K56Ac蛋白是否被其同源抗体识别为抗原(图4)。Western blotELISA实验表明,针对天然的ɛ-乙酰赖氨酸在H39位和56位产生的抗体分别与H3K4C**K9AcH3R52C**K56Ac结合,使用抗H3K9Ac抗体的Western blot没有显示H3R52C**K56Ac蛋白的信号。当产生一个双位点特异性的H3K4C**K9AcR52C**K56Ac时,在956位乙酰化赖氨酸都得到了印迹信号。Sirt3是一种依赖NAD +的组蛋白去乙酰化酶,两种蛋白用Sirt3孵育均出现了显著的去乙酰化。以上结果说明邻近位置Cys突变以及额外引入的click部分没有对修饰产生非常大的干扰。

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4.Western BlotELISA实验证实乙酰化方法的位点特异性

综上所述,作者开发了一种利用半胱氨酸突变结合点击化学的方法,驱动赖氨酸残基的定向位点特异性乙酰化。方法包括两个连续的步骤:蛋白质的独特半胱氨酸马来酰亚胺- DBCO之间反应,然后是DBCO和带有乙酰基供体的叠氮化合物之间的SPAAC反应。然后,乙酰基供体羰基上最近的赖氨酸侧链胺亲核攻击触发自发乙酰化。这种方法可用于蛋白质特定位点上翻译后修饰机制和功能的研究中。

原文:https://doi.org/10.1002/anie.202208543


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