Angew. Chem. Int. Ed.|DNA修复构建折叠纳米开关用于检测DNA修复酶的活性

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今天为大家分享一篇发表在Angew. Chem. Int. Ed.上的文章,题目为“Folding-upon-Repair DNA Nanoswitches for Monitoring the Activity of DNA Repair Enzymes”,本文中作者设计了一种可以检测DNA甲基转移酶活性的DNA纳米开关。本文的通讯作者是来自罗马第二大学的Alessandro Porchetta博士,Francesco Ricci教授和来自意大利国家研究委员会的Giuseppe Perugino博士。


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【背景介绍】
细胞内多种DNA修复机制是细胞应对DNA损伤的主要途径,例如碱基切除、核苷酸切除以及基于O6甲基鸟嘌呤(O6-MeG)的DNA甲基转移酶(AGT酶)的碱基直接修复。AGT酶可以通过类似SN2反应的机理直接去除鸟嘌呤O6位置的烷基,是一种遗传保守的生物催化剂。同时,甲基转移酶的活性对一些基于烷基化反应的化疗药物的疗效有很大影响,因此有必要发展一种测定甲基转移酶活性的方法。
目前甲基转移酶的活性测定通常使用含放射性O6-MeG的寡核苷酸,并通过色谱法分离反应产物,这种方法耗时且不安全。而DNA纳米开关是一种新型的可编程的探针,可以通过与靶标结合后的构象变化实现信号输出,因此已经广泛应用于多种靶标,如pH、金属离子、小分子、蛋白等的检测。由于其在产生信号的同时发生了构象变化,基于DNA纳米开关的检测一般可以实现较高的选择性与特异性,因此可以应用于对多种靶标的高特异性高灵敏度的检测。
【设计思路】
本文中作者将DNA纳米开关用于DNA甲基转移酶活性的测定。作者设计了一种包含O6-MeG的荧光标记的DNA纳米开关用于检测DNA甲基转移酶的活性。当甲基转移酶发挥活性修复纳米开关中的O6-MeG后,纳米开关的构象会发生变化,产生FRET信号输出。这种纳米开关理论上可以测定所有DNA甲基转移酶的活性,并有望用于高通量筛选甲基转移酶抑制剂。



【实验数据】
如图1(a)所示,DNA纳米开关的设计基于三碱基配对作用。在弱酸性条件下,G碱基可以同时与C甲基和质子化的C+离子形成氢键,从而形成如图b所示的三链结构,产生FRET信号输出。而当G碱基O6位置被甲基化后,G与C+离子间就只有一个氢键,三碱基配对效应会变得不稳定,FRET信号减弱,Cy3荧光信号增强。基于这样的原理,作者设计了三种DNA纳米开关: Triplex,1-MeTriplex,2-Me Triplex,分别含0、1、2个O6-MeG碱基。通过在弱碱性和弱酸性条件下的荧光表征可以看出在碱性条件下开关基本都处于打开状态,而随着pH减小,开关逐渐变为三链结构,但随着加入的O6-MeG碱基数变多,在相同pH下变为三链结构的纳米开关比例会降低,证明了O6位置甲基化会干扰作者设计的纳米开关形成三链结构。


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图1 DNA纳米开关原理图与荧光表征

为了进一步解释G碱基O6甲基化对三链结构的影响,作者对设计的纳米开关进行了分子动力学的模拟。作者模拟了如图2(a)所示序列的三链DNA纳米开关,并重点关注了2个参数:如图2(b)所示的碱基G7和C+35的展开角和如图2(c)所示的碱基G7和C+35的距离。当纳米开关形成稳定的三链结构时,这两个参数的分布曲线呈单峰且分布很窄(图2(d), (e)左)。而当加入1个和2个O6-MeG碱基时,其展开角和距离分布呈现了多个峰,且分布变宽,说明存在多种松散的三链结构,进一步证明了O6-MeG碱基可以破坏DNA纳米开关的三链结构。

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图2 DNA纳米开关的分子动力学模拟

接下来作者通过SDS-PAGE表征了纳米开关与多种甲基转移酶的反应。甲基转移酶只能参与一次去甲基反应,当甲基转移酶与纳米开关上的O6-MeG发生反应后,甲基会转移到酶上的反应位点巯基上,使酶无法再进行甲基转移反应。因此作者在甲基转移酶与纳米开关反应后加入了荧光底物O6-BG荧光衍生物,从而通过甲基转移酶上的绿色荧光强度判断它是否与DNA纳米开关上的O6-MeG发生反应,并通过纳米开关的FRET信号判断其是否可以形成三链结构。作者首先尝试了人类甲基转移酶(hMGMT)和具有热稳定性的硫磺矿硫化叶菌甲基转移酶(SsOGT)与纳米开关的反应,如图3(c)所示,当不加入纳米开关和加入Triplex开关时,甲基转移酶只与荧光底物发生反应,而加入1-Me Triplex和2-Me Triplex时,甲基转移酶上没有绿色荧光信号,而纳米开关可以形成三链结构,说明甲基转移酶与纳米开关发生了甲基转移反应。作者又将纳米开关与两种对照酶——不和O6-BG反应的E. coli Ada-c酶以及只与O6-BG反应不与O6-MeG反应的突变酶SsOGT-H5酶孵育,得到的结果也符合预期,E. coli Ada-c处理后酶上没有绿色荧光信号,而SsOGT-H5酶处理后2-Me Triplex纳米开关保持了其电泳条带移动速度快的性质,证明它没有发生去甲基化反应。这些实验证明了此纳米开关的构象可以受到甲基转移酶的调控。


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图3 DNA纳米开关与不同甲基转移酶的反应SDS-PAGE表征

然后作者研究了纳米开关构象变化与其FRET信号的相关性。作者将三种DNA纳米开关与hMGMT酶孵育后测定了其荧光光谱,如图4(c), 4(d)所示,经过甲基转移酶的处理,两种含有O6-MeG的纳米开关的FRET信号均有增强,且这种信号响应与加入的甲基转移酶的浓度线性相关。作者再次尝试了SDS-PAGE表征中使用的SsOGT酶以及两种对照酶E. coli Ada-c酶和SsOGT-H5酶,结果如图4(f)所示:SsOGT酶与hMGMT酶和阳性对照酶E. coli Ada-c酶结果类似,均可以使FRET信号增强,而阴性对照酶SsOGT-H5酶基本不会提高FRET信号,证明了纳米开关用于甲基转移酶活性测定的可行性。

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图4 纳米开关检测甲基转移酶活性可行性探究

最后,作者使用纳米开关探究了不同抑制剂对甲基转移酶的抑制作用。作者首先使用O6-BG作为模型体系,hMGMT酶预先与O6-BG孵育后再与纳米开关2-Me Triplex纳米开关孵育时其FRET信号与无甲基转移酶调价下该开关的FRET信号强度基本一致(图5(b)),说明hMGMT酶已被抑制。接下来作者测定了不同浓度O6-BG下hMGMT酶被抑制的程度,得到了其IC50值为3.5 ± 2 μM。不同甲基转移酶抑制剂条件下hMGMT酶被抑制的程度也可以通过纳米开关的FRET信号表征,证明了纳米开关用于甲基转移酶活性检测的通用性。


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图5 DNA纳米开关用于甲基转移酶抑制剂研究
【总结】

本文作者介绍了一种含有O6-MeG碱基的三链DNA纳米开关,该纳米开关可在DNA甲基转移酶的作用下脱去甲基发生构象变化进而产生FRET信号输出。作者通过分子模拟和酶反应实验证明了此纳米开关能够用于DNA甲基转移酶的活性检测,并有望用于高通量抑制剂筛选。由于其高特异性、高灵敏度的特点,该方法也可以应用于多种其他DNA修复酶的活性检测。


撰稿人:赵凯峰
校稿人:Chen Xin
原文链接:https://doi.org/10.1002/anie.202016223


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