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分享的是一篇发表在Analytical Chemistry上的文章,通讯作者是中国药科大学的郝海平教授。其工作主要关注内源活性分子代谢调控与药物靶标/确证研究,以及中药/天然药物复杂成分代谢处置规律与机理研究。在本文中,作者使用FDA批准的法尼醇X受体(FXR)激动剂奥贝胆酸(OCA)为底物合成了一种具有光反应性的可点击化学探针,并且成功实现了FXR的原位标记。这一方法为FXR生物学的研究提供了新的化学工具,同时这一方法还可以应用于其他核受体的研究。
首先,FXR受体是核受体超家族的一员,是一种重要的配体激活转录因子,主要在肝脏,肠道以及肾上腺中高度表达。在结合配体后,FXR会进入细胞核与靶基因的启动子结合,从而调节他们的转录。其表达水平受到许多因素的影响,比如饮食与昼夜节律。同时FXR还与胰岛素抵抗,炎症,细胞凋亡等生物学现象有关,因此这些特征也使其成为了诸如胆管炎,肥胖,非酒精性脂肪肝等疾病治疗的重要靶点。但是目前没有一种可以在体内实时监测FXR的方法,因此也限制了我们对FXR生理与病理学功能的研究。 此外,FXR受体还存在转录非依赖性功能,即其蛋白质水平,而非其转录活性所带来的生理学功能。因此对其表达水平的实时监测是至关重要的。目前对蛋白质表达水平进行监测的主要方式是Western Blot和免疫组织化学或者免疫荧光染色。但是Western Blot需要进行细胞裂解,无法对活细胞进行监测。而免疫组织化学或免疫荧光染色虽然可以做到活细胞监测,但需要制备特异性抗体,工序繁琐。 基于以上问题,作者团队设计开发了一个特异性结合FXR的具有光反应性的可点击化学探针,成功实现了对细胞中FXR表达的监测与原位标记。 OL2和OLNCA探针的设计与合成。 首先一个良好的生物正交光亲和探针通常需要具有以下三个特征,即(1)可以特异性的且高效的与目标蛋白进行结合。(2)可以在外部激活信号下通过共价结合的方式与目标蛋白进行结合从而实现探针对蛋白的锚定。(3)可以通过Click反应与荧光分子或生物素等报告分子进行结合。因此,为了满足这三点要求,作者选择了OCA这种FDA批准的高选择性FXR激动剂作为探针合成的底物以实现特异性结合FXR受体。其次对其修饰上双吖丙啶以及炔基,利用双吖丙啶实现光交联,炔基实现Click报告。基于这一思路,作者先后合成了OL2探针以及通过点击化学对OL2引入荧光基团后得到的OLNCA探针。 方案1. FXR光亲核探针OL2和OLNCA探针的合成路线。 OLNCA的荧光特性以及OL2与FXR-LBD重组蛋白的结合亲和力。 通过检测OLNCA,OL2以及NCA的荧光特性,作者发现OLNCA在440nm处具有强吸收,以及520nm处有着强荧光,其荧光发射强度几乎是NCA的10倍,这很可能是由于NCA通过Click反应与OL2结合后形成了更大的共轭体系,使得电子离域性进一步增强所致。由此确定了OLNCA具有较好的荧光特征,满足荧光标记的需求。而后作者使用生物膜层干涉测量技术(BLI)研究了OL2与FXR-LBD重组蛋白的结合能力,结果显示探针与FXR-LBD重组蛋白的结合能力具有较高的Kd值,这表明两者具有较高的结合能力。 图1. a、OL2,NCA以及OLCNA的光学性质。b、通过BLI检测OL2与FXR-LBD重组蛋白的结合亲和力。
同时通过OL2、OLNCA分别与FXR-LBD光交联后的LC-MS/MS数据也发现OL2与FXR的第89个氨基酸发生结合,而OLNCA与第85个氨基酸发生结合。进一步证明了OL2以及OLNCA可以高效地与FXR-LBD重组蛋白发生结合。
图2. a、OL2。b、OLNCA与FXR蛋白的结合位点。 探针OL2在HepG2细胞中对FXR的生物成像。 鉴于FXR-LBD重组蛋白与OL2以及OLNCA的结合能力检测的优良结果,作者决定对HepG2人肝癌细胞系使用该探针进行成像,这也符合FXR在肝脏中高表达的特点。为了验证OL2确实可以和细胞中的FXR蛋白结合,作者分别使用OL2+NCA以及FXR抗体对细胞共同进行孵育,发现荧光具有高度重合性,这就表明OL2与FXR可以发生良好的特异性结合。 图3. 探针OL2以及FXR特异性抗体在HepG2细胞中的荧光成像。
通过OL2与FXR在HepG2细胞中对FXR的共定位荧光成像也进一步表明了OL2与FXR特异性抗体的生物成像具有良好的共定位作用。
图4. 探针OL2以及FXR特异性抗体在HepG2细胞中对FXR荧光图像的共定位。
对FXR转录非依赖性功能的研究要求可以对FXR进行相对定量的检测。scramble或FXR特异性siRNA转染至HepG2细胞以敲低FXR表达。Western Blot显示FXR蛋白的表达水平显著降低。荧光成像也表明不论是抗体还是探针,其荧光强度都显著降低。表明探针可以有效监控FXR的表达水平。
图5. FXR·siRNA转染的HepG2细胞中FXR的荧光图像以及Western Blot图像。 由于上述实验都是在固定细胞中进行,为了检测活细胞中探针的功能,作者使用OLNCA对活细胞进行实验。据研究表明,FXR的表达在各种肝病中被显著抑制,为了检测该策略是否可以监测生理和病理学条件下FXR的表达,作者首先采用LPS处理HepG2细胞诱导其炎症反应,而后利用探针对其荧光强度进行检测。试验结果表明Western Blot中蛋白条带明显变淡,荧光强度也有显著下降。 图6. LPS诱导的炎症HepG2细胞中FXR的荧光图像以及Western Blot。
再通过使用各种刺激物诱导细胞凋亡后使用探针对FXR表达量进行检测,同样发现了FXR在凋亡信号刺激下被显著降解。
图7. 凋亡HepG2细胞中FXR的荧光图像。
由于FXR受体与激动剂结合后会被转运至细胞核,因此作者希望探索其他是否可以监测细胞中FXR的亚细胞分布。通过Western Blot证明,在加入激动剂后细胞核中的FXR水平显著提升,同时细胞质中FXR水平降低,表明FXR激动剂促进了FXR向核的迁移。
图8. FXR激动剂处理的AML-12细胞中的FXR荧光图像。 总之,本文中作者成功开发了一种选择性FXR特异性结合的光反应性可点击化学探针,并成功做到了FXR的原位成像以及亚细胞定位。这一方法不仅有利于FXR药物研发,同时也可以应用于其他核受体的研究。 文章作者:QJL 原文引用:10.1021/acs.analchem.2c01206
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